Ⅰ 請問小鼠斷頭取血法最多可以取多少血可以用1.5ml的管子接著嗎會不會噴射出去
看小鼠年齡，成年的話大約可以取1ml左右。
不過這種取血法不好，容易混入唾液，毛等等。
看這個資料
1）尾尖取血：當所需血量很少時採用本法。固定動物並歷出鼠尾，將鼠尾在45℃溫水中浸泡數分鍾，也可用二甲苯等化學葯物塗擦，使局新血管擴張。將鼠尾擦乾，剪去尾尖，血自尾尖流出，讓血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需間隔一定時間，多次採取鼠尾尖部血液，每次采血時，將鼠尾剪去很小一段，取血後，先用棉球壓迫止血並立即用6％液體火棉膠塗於尾巴傷口處，使傷口外結一層火棉膠薄膜，保護傷口。也可採用切割尾靜脈的方法采血，三根尾勢脈可交替切割，並自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割後用棉球壓迫止血。這種采血方法在大鼠進行較好，可以較長的間隔時間連續取血，進行血常規檢查。
（2）眼眶後靜脈叢取血：當需中等量的血液，而又需避免動物死亡時採用此法。用左手固定鼠，盡量捏緊頭部皮膚，使頭固定，並輕輕向下壓迫頸部兩側，引起頭部靜脈血液迴流困難，使眼球充分外突（示眼眶後靜脈叢充血），右手持毛細玻璃管，沿內眥眼眶後壁向喉頭方向旋轉刺入。刺入深度小鼠2～3mm，大鼠4～5mm。當感到有阻力時再稍後退，保持水平位，稍加吸引，由於血壓的關系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量後，撥出毛細管。若手法恰當，小鼠約可采血0.2～0.3ml，大鼠約可采血0.4～0.6ml。
（3）斷頭取血：當需要較大量的血液，而又不需繼續保存動物生命時採用此法。左手捉持動物，使其頭略向下傾，右手持剪刀猛力剪掉鼠頭，讓血液滴入盛器。小鼠可采血0.8～1.0ml，大鼠可採用5～8ml。
（4）眶動脈和眶靜脈取血：此法既能採取較大量的血液，又可避免斷頭取血法中因組織液的混入導致溶血的現象，現常取代斷頭取血法。先使動物眼球突出充血後，以彎頭眼科鑷迅速鉗取眼球，並將鼠倒置，頭向下，眼眶內很快流出血液，讓血液滴入盛器，直至不流為止。此法由於取血過程中動物未死，心臟不斷在跳動，因此取血量比斷頭法多，一般可取鼠體重4～5％的血液量，是一種較好的取血方法。
（5）心臟取血：動物仰卧固定在固定板上，剪去心前區部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮膚。在左側第3～4肋間，用左手食指摸到心搏處，右手取連有4～5號針頭的注射器，選擇心搏最強處穿刺，當針刺入心臟時，血液由於心臟跳動的力量自動進人注射器。此法要求實驗者掌握以下要點：要迅速而直接插入心臟，否則，心臟將從針尖處滑脫；如第一次沒刺准，將針頭抽出重刺，不要在心臟周圍亂探，以免損傷心、肺；要緩慢而穩定的抽吸，否則，太多的真空反而使心臟塌陷。若不需保留動物生命時，也可麻*醉後切開動物胸部，將注射器直接刺人心臟抽吸血液。
（6）大血管取血：大、小鼠還可從頸動、靜脈，股動、靜脈和腋下動、靜脈取血，在這些部位取血均需麻*醉後固定動物，然後作動、靜脈分離手術，使其暴露清楚後，用注射器沿大血管平行刺入（或直接用剪刀剪斷大血管），抽取所需血量。切斷動脈時，要防止血液噴濺。
Ⅱ 小鼠要怎麼取血
主要有三類方法：
1、少量取血：鼠尾采血法——固定動物並露出鼠尾，將尾部侵入45-50度溫水中數分鍾，使靜脈充血，擦乾，再用酒精棉球擦拭消毒。剪掉尾尖約0.2-0.3cm。拭去第一滴血。然後用毛細管定量吸取尾血。采血完畢用棉球壓迫止血
2、中等量取血：眼眶靜脈叢采血——左手拇指及食指緊緊握住小鼠頸部，壓迫頸部兩側使眶後靜脈叢充血，但用力要恰當，防止動物窒息死亡。右手持玻璃毛細管從右眼或左眼內眥部以45度角刺入，刺入深度為2-3mm。若遇阻力稍後調整角度後再刺入，如穿刺恰當，血液能自然流入毛細管內。得到血厚，即除去頸部壓力，拔出毛細管，用干棉球壓迫止血
3、大量采血：斷頭采血——用於動物實驗結束後。左手握住小鼠，右手持剪刀，快速剪掉頭頸部，倒立動物讓血液滴入容器。注意防止斷毛落入
Ⅲ 小白鼠采血三種方法的優缺點，謝謝！
1.采血部位：眼眶采血
采血方法：將鼠固定在實驗台邊緣，左手抓緊鼠頸部皮膚固定頭部，並輕輕向下壓迫頸兩側，使眼球充血。用事先准備好的10號金屬針頭頂端(針尖斜面朝內)垂直插入內眥並向眼底方向轉動以便切開靜脈叢，血液便會連續不斷地滴入采血管。用此法大約可取3~5mL血液。取血完畢，立刻用脫脂棉壓迫止血。
優點：眼眶後靜脈叢采血法方法簡單，便於掌握。血流較快，采血量多，能在較短時間內採到3~5mL血。傷口較小，癒合較快。成功率高，死亡率低。
缺點：不能避免組織液的混入，對於血樣要求較高的研究應謹慎使用。另外，多次使用易引起大鼠的感染。對後續試驗結果存在一定影響。
2.摘眼采血：鼠可以眼球取血，需要多多練習。一般來說，可以三人配合取血。取血前不需麻醉，用眼科剪剪掉大鼠的胡須（胡須過長，血液滴下的時候容易沾在胡須上，既浪費，又造成溶血，故應剪掉）。
所需器械：眼科小剪、眼科彎鑷、止血鉗。
一人抓大鼠並用眼科彎鑷摘眼球，一人用止血鉗夾住大鼠的嘴部以固定大鼠頭部，另一個人拿試管接血。
大鼠在掙扎過程中，很容易導致血液丟失，因此固定頭部很重要，否則只有眼看著血液亂飛，卻不入試管。摘眼球也需要技巧，否則眼球摘下來了，而血液卻不流出來，應多多練習
優缺點不太清楚啊，只知道我一個學長摘眼球的時候被咬了一口，挺殘忍的
3.采血部位：心臟取血（其實這個一般用在家兔）
采血方法：將實驗動物做仰卧有助手固定，術者在其左前肢腋下處剪毛及消毒。在胸部心臟跳動最明顯處，用一寸長的12好針頭直刺心臟，感到以針頭跳動或有血液內流動時。即可抽血。一次可采血15-20ml
優點：抽血快，血液不易凝集，心區面積大, 進針准確性較高, 易一針見血, 且采血量能滿足大量試驗需要
缺點：心臟損傷較大，難以迅速癒合，不利於短期連續采血。
3『.采血部位：心臟采血（剪開皮膚）
采血方法：從胸部正中剪開皮膚2.0~2.5cm。暴露肋骨和肌肉。左手拇指和食指從胸廓兩則擠壓，以確定心臟的位置，此時可觸摸到心尖的搏動。然後拇指松開，右手持注射器（7號針頭），在胸骨左側（對操作者來說是右側），離胸骨0.5cm的第三肋和第四肋之間進針，並使針頭與肋骨側成90°左右的夾角。進針的深度為2cm左右（根據動物大小而定）。進針時用左手拇指和食指夾住心臟博動的位置，使之固定，進針要快。若針頭進入心室，由於壓力的原因血液會自動進入針管，抽起來很容易。若進針過深，就一邊回退一邊抽。若進針過淺，可感覺到針頭隨心臟的博動而搖動，這時可再進深一些。
優點：采血量大，樣本質量可靠。
缺點 ：不能保證完全是動脈血，因進針的方向或操作問題亦可采出靜脈血。另外，應用本采血方法後，有部分鼠可造成死亡，因此不適合對動靜脈血有嚴格要求的實驗研究，亦不適用於試驗中間過程的采樣。
Ⅳ 為何需要在麻醉狀態下進行實驗動物心臟采血答案
動物畢竟不是人，而心臟也不是一般的器官，在非麻醉狀態下實驗動物很難受人控制，如果出現劇烈掙扎，采血針對心臟造成嚴重損傷可能會導致實驗動物死亡，損失實驗動物和一劑麻醉劑比起來顯然是相當不值的一件事。
Ⅳ 小鼠眼球取血技巧是什麼
小鼠摘除眼球采血及分離血清
一．器材
離心管，彎頭鑷子，離心機，移液器
二．步驟
1. 摘除眼球采血
（1）左手拇、食指抓取小鼠雙耳及頸後皮膚，小指固定尾部；
（2）中指將小鼠左側前肢輕壓在胸骨心臟部位，無名指按在腹部，捻動拇指，輕壓取血側眼部皮膚，使眼球充血突出；
（3）用彎頭鑷夾取眼球；
（4）根據需要捻動拇指與食指的方向，使血液從眼眶內以不同速度垂直流入離心管；
（5）同時用左手中指輕按小鼠心臟部位，以加快心臟泵血速度；
（6）當血液流盡時，用脫臼法處死小鼠。
2. 分離血清
（1）將離心管中的血置37℃溫箱或水浴1小時，也可室溫2小時；
（2）再置4℃冰箱內3～4小時或過夜；
（3）待血液凝固血塊收縮後，4000rpm離心10分鍾；
（4）取上清於干凈的離心管中，保存於-20℃，或加入防腐劑(0.01％硫柳汞或0.02％疊氮鈉)，置4℃冰箱中保存備用。
三．注意：
1. 采血前，可給小鼠喂點水；
2. 摘眼球采血取血量能達0.8～1.2ml，但老年和疾病小鼠血量會降低；
3. 采血場所有充足的光線；室溫夏季保持在25～28℃，冬季，15～20℃為宜；
4. 防止血液浸入眼部周圍毛發，否則會造成污染和溶血；
5. 按壓心臟時，用力一定要適度，若用力過度，一是會造成動物采血中途死亡，使采血不完全，二是有可能引起溶血現象發生，影響實驗結果；
6. 采血用的器材和試管必須保持清潔乾燥；
7. 采血時要防止小鼠掙扎，否則會損失比較多的血樣；
8. 血液凝固後不宜在4℃放置過久，否則會溶血。
說明：心血總結送給你了，版權所有違者必究！
Ⅵ 小鼠眼球靜脈采血 這個實驗過程中，需要的實驗材料都有啥請做過的來個詳細的介紹 謝謝
這個實驗我做過。
所有的材料要先清洗並滅菌。
1.用鑷子直接將眼球摘除（這個是需要技巧的，有時候摘的不好，血會很少，最好先練習下）
2.摘除眼球後血就會直接流出來，這個時候用EP管，口挨著眼睛那裡就可以接了，當時我用的1.5ml的EP管就差不多夠用了。根據你小鼠的大小，可以提前先試一下大概能接多少。
3.接完後將EP管放在架子上放進4度凝固一會兒就可以離心了
4.離心後用移液槍取上清測定。
PS：抓老鼠要注意哦，小心被抓傷、咬傷。
Ⅶ 小白鼠幾種采血方法的優缺點
我根據自己的經驗給你回答一點，可能不全，但常用的應該就是這幾種。
對小白鼠來說最常用的方法是眼眶取血，即用毛細管刺入小鼠眼眶。由於眼球下有大量毛細血管，而且眼附近毛較少，這樣可以取得較多的比較干凈的血液，而且一隻眼睛沒做好還可以用另一隻，小白鼠不會很快死亡，有需要的話還可以做點別的實驗，但這種方法的采血量有限，一般一次就幾毫升而且如果做的不是很好的話，血液很容易凝固而且可能搞得小鼠「面目全非」。
第二種方法是尾部采血，即用剪刀剪斷小鼠的尾巴采血，這種方法沒我怎麼用過，對其不好做評價。
第三種方法是斷頭采血，用這種方法最大的優點是采血量大而快速，血液不易凝固，但這樣的話，小鼠再就不能做別的了，當然有可能的話我們可以在做完別的操作後再來做這個。
不同的動物有不同的采血方法，如對兔子來說我們可以用耳緣靜脈采血、心臟采血的方法，但對小鼠來說主要的應該就是上面說的三種了。
Ⅷ 如何對小豬進行心臟采血
豬前腔靜脈采血 豬的前腔靜脈位於豬的頸部近身體中線。采血時朝向離心方向進針。在采血時如果有條件使用采血針結合真空采血管在操作上會比使用注射器更方便些。保定很重要,一般豬的保定需要四個人,把豬仰卧放在一個約有80厘米左右高的檯子上,其中甲人保定後肢,乙人保定頭部,丙人保定前肢.丙人的保定很重要，丙的保定,直接決定采血者能否采出血來,丙要把豬的兩前肢立起來。豬前腔靜脈，在第一對肋骨間的胸腔入口處的氣管腹側面，由左右兩側頸靜脈和腋靜脈匯合形成。該血管在一周齡豬直徑約5mm，成年豬約1cm以上。采血部位在第一對肋骨與胸骨柄結合處直前，但由於左側 靠近膈神經，故以右側采血為宜。大家在采血的時候一定注意針頭的安全,不要隨便亂仍,用完了要蓋好,這點很重要,不然很容易扎到別人,還有豬在掙扎的過程中,不要進針,等豬安靜了再扎, 40-60今左右的豬,采血的時候針的深度一般掌握在0.6-0.9厘米左右就行了. 如果一下扎不出來,請拔出針重新紮,扎的時候不要緊張,扎不出來,多扎兩次,熟能生巧。 豬隱靜脈注射與前腔靜脈注射 在耳靜脈輸液不順利或找不到明顯的耳靜脈時，可從採用隱靜脈注射或前腔靜脈注射。 隱靜脈——位於兩後肢股內側，小豬，術者用右腳踏左側頸部，左腳踩住豬右後肢跗關節，作側卧保定，大腿內側有一條明顯的靜脈，即可進行注射，相反左腳踏住右側頸部，右腳踩住豬左後肢附關節，作側卧保定，也可進行，大豬則需助手按壓側卧即可。 前腔靜脈——位於右側胸腔入口處，此靜脈是進入右心室前的一段靜脈，外表看不見，摸不著，全賴保定穩妥，術者進針部位角度、深淺而獲得，保定時取正位仰卧，兩後肢呈八字拉直，兩前肢向後拉伸，頭部呈正面擺端（三個人作助手），術者在豬的前右方，持帶12號1.5寸針頭的一次性注射器（20ml或10ml）左手拇指壓住胸腔入口凹陷處，針頭沿指甲側面斜向45°刺入，邊進針，邊回抽注射器活塞，待有回血時，即進行注葯或采血（如右圖）。 成功關鍵在於：保定穩妥，部位準確，角度深淺適宜即可成功。